Western Blot(WB)作为分子生物学的经典实验技术,几乎是每一位生物学霸的必修课。它不仅可以检测目标蛋白的表达情况,还能通过条带的强弱、位置等信息,为研究提供关键线索。

不过,WB 实验有时能让你欲哭无泪。今天学霸君整理了一些当代 WB「疯癫」作品集,顺便分享一些经验教训,希望对正在实验室里「摸鱼」的你有所帮助。

类型一:表情包型结果

  • 跑出惊叹号(!)

网友投稿自己的 WB 结果,像一个大大的惊叹号,条带清晰,但一点用没有。这可能是因为蛋白表达量过高,或者上样量过多导致的。


图源:网络

原因——

蛋白上样量过多,导致条带过于集中。

目标蛋白本身表达量过高,掩盖了其他条带。

建议——

适当减少蛋白上样量,或者对样品进行稀释后再上样。

如果目标蛋白本身就高表达,可以尝试降低抗体浓度,避免过度显色。

  • 跑出鬼脸(-V-)

有的结果看起来像是在做鬼脸,条带扭曲、变形,甚至可能出现奇怪的形状。这通常是由于电泳条件不稳定,或者转膜过程中出现问题。

比如,电泳电压过高、时间过长,或者转膜时电流过大,都会让条带变得 「面目全非」。


图源:网络

原因——

电泳电压过高或时间过长,导致条带变形。

转膜时电流过大或转膜时间过长,导致条带扭曲。

建议——

降低电泳电压和时间,确保电泳条件稳定。

在转膜时检查电极方向是否正确,避免电流过大。

使用丽春红 S 染色检测转膜是否完全

类型二:2B 型结果

并不是在骂人哈,而是条带宛如 2B 涂卡笔型,糊成一片,背景高到几乎看不到目标条带,就像是一张被涂黑的试卷,让人无从下手。



图源:网络

原因——

抗体浓度过高,导致非特异性结合增加。

孵育时间过长,背景信号增强。

封闭不充分,膜表面未完全封闭,导致抗体非特异性结合。

建议——

降低抗体浓度,建议进行梯度稀释以找到最佳浓度。

缩短孵育时间,避免过度孵育。

延长封闭时间(建议 1 小时以上),并确保封闭液(如 5% 脱脂奶粉或 BSA)新鲜且均匀覆盖膜表面

类型三:艺术型结果

  • 水墨画

水墨画型结果偶尔会出现,稍显「随性」,条带可能没有那么清晰,但整体效果依然很美,给自己的作品定一个亿的价格不过分吧


图源:网络

原因——

抗体特异性稍差,或样品中存在非特异性蛋白。

建议——

选择特异性更高的抗体,或在样品处理时加入蛋白酶抑制剂。

如果背景仍然较高,可以尝试延长封闭时间或降低抗体浓度。

  • 抽象艺术画

有的结果看起来像是抽象派艺术画作,条带形状奇特、位置不规则,甚至可能出现一个黑色的「大泡泡」。


图源:网络

原因——

转膜时气泡:膜和凝胶之间存在气泡,导致显色异常。

膜或凝胶未充分浸润:局部电流集中,形成显色圈。

缓冲液不足或不均匀:导致局部电流异常。

建议——

排除气泡:转膜前确保膜和凝胶紧密贴合,无气泡。

充分浸润:确保膜和凝胶完全浸润在缓冲液中。

脱气缓冲液:转膜缓冲液使用前脱气处理。

保持湿润:实验过程中避免膜干燥。

优化条件:适当调整转膜时间和电流。

类型四:猫猫型结果

虽然不能用,但很可爱,有两个角角。这种结果可能是由于蛋白降解,或者样品处理不当,导致条带出现奇怪的形状。


图源:网络

原因——

蛋白降解:样品在处理或保存过程中发生降解,导致条带出现碎片化或异常形状。

裂解条件不当:裂解液配方或裂解时间不合适,导致蛋白过度降解或变性。

样品保存不当:样品在保存过程中未保持低温或未添加足够的蛋白酶抑制剂。

建议——

加入蛋白酶抑制剂:在样品裂解时加入适量的蛋白酶抑制剂(如 PMSF、EDTA 等),以防止蛋白降解。

优化裂解条件:调整裂解液配方或裂解时间,确保蛋白在裂解过程中保持稳定。

今天 WB 结果图大赏就到这了,你是否也经历过类似的「艺术级 」WB 结果,以下这些结果你都「解锁」过哪些呢?

速来投票!!

如果你还有其他有趣的结果,也欢迎分享你的「WB 艺术作品」!一起交流经验,早日告别「疯癫」条带,拥抱「梦中情带」!

题图来源:图虫创意

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