作者:宠物医师网

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文章来源:https://www.theveterinarynurse.com/content/clinical/emergency-care-of-a-cat-with-a-ruptured-bladder

一、背景

一只7个月大的家养短毛公猫Crumble,疑似从一楼窗户跌落后被送往医院。主人报告说,Crumble是一只室内饲养的猫,早晨被发现时正在外面呕吐,由于没有其他可能导致伤害的方式,主人推测它是从一楼的开放窗户跌落的。

尿腹最常见的原因是腹部创伤(Fossum, 2009),本例中是由跌落造成的。许多钝性创伤会导致膀胱破裂(Findji, 2012)。腹腔穿刺通常是确认尿腹诊断的最佳方法(Kellett-Gregory, 2020)。在修复之前,稳定患宠至关重要,包括管理高钾血症、代谢性酸中毒、氮质血症、低血压和疼痛

Crumble在麻醉下进行手术,以修复膀胱顶端的C形撕裂。修复完成后,还对其腹腔和膀胱进行了冲洗。进一步的手术考虑包括低血压、低体温、脓毒症和低血容量。Crumble继续使用静脉晶体液(哈特曼溶液)、去甲肾上腺素、抗微生物药物以及多模式镇痛,并使用Bair Hugger(3M)来协助治疗。

二、治疗记录

临床检查发现Crumble呼吸急促,轻度呼吸困难,粘膜呈淡粉色,毛细血管充盈时间为2秒,心率为150次/分钟,胸部听诊清晰,无明显骨折,触诊时腹部不适,眼科检查正常,Crumble能够自主行走。

09:05患宠入院

进行进一步检查和镇痛,初步给予0.3 mg/kg的美沙酮,并进行10 ml/kg的静脉推注液体,持续15分钟

Crumble的体温为36.3℃,提示低体温。因此使用Bair Hugger加热器来保暖

工作人员在使用振荡式血压计和多普勒监测仪时均无法测量血压,脉搏质量较差。虽然Crumble精神状态反应良好,但较为安静。抽取的血液显示氮质血症,肌酐水平升高,高钾血症>12.0 mmol/L(正常范围3.8-5.8 mmol/L),pH值为7.06(正常范围7.25-7.40),基础过剩减少至-16 mmol/L,乳酸水平正常,提示由严重尿毒症引起的代谢性酸中毒。为了纠正酸中毒,从当地转诊中心调取获得了碳酸氢钠。计算了葡萄糖酸钙的剂量,但未按1 mg/kg/15分钟给予。将静脉输液治疗(IVFT)从哈特曼溶液更改为生理盐水进行重复推注。

Crumble继续以32 ml/h的速度输液。

10:30第一次抽血复查

Crumble依然处于酸中毒状态,pH值为7.07,并且高钾血症仍然存在,钾水平为5.6 mmol/L(正常范围2.9-4.2 mmol/L)。未给予葡萄糖酸钙,但通过心电图(ECG)持续监测心率和心律。由于Crumble腹部仍然疼痛,因此决定增加镇痛剂的剂量。额外给予0.2 mg/kg的美沙酮。放置了尿管并进行了超声检查。超声显示腹腔内有液体。

在此时Crumble仍然不适合进行麻醉。

使用23号蝶形针在超声引导下从腹腔引流出70 ml血性浆液。排液后决定开始给予20 mg/kg的复方氨苄青霉素,以防止肠道漏出及腹腔内可能存在尿液。使用多普勒重复测量血压时显示读数为68 mmHg

Crumble继续以32 ml/h的速度输液,以管理可能出现的低血容量。

12:10时再次抽血复查

钾水平稳定在5.3,pH值为7.14。

与急救和重症护理转诊团队沟通后,决定此时不需要碳酸氢钠。患宠继续以32 ml/h的速度进行静脉输液,但仍然低血压且无法测量血压,因此决定给予5 ml/kg/15分钟的明胶溶液推注。虽然进行了X光检查,但由于疼痛限制,结果显示有少量胸腔积液;然而,由于疼痛未得到控制且呼吸稳定,因此未进行引流。X光片上未见下肢或骨盆明显骨折,但由于视野有限,无法排除骨折的可能性。Crumble仍然心动过速和呼吸急促,并伴有疼痛,因此开始以3 mcg/kg/小时的芬太尼进行持续输注(CRI)。

主人选择让Crumble留在医院,而不是转诊。主人希望尽快进行手术以查找破裂的原因。在医院兽医与转诊诊所沟通后,Crumble被评定为美国麻醉师协会(ASA)5级危重状态。因为使用明胶溶液后未见改善,Crumble开始接受去甲肾上腺素(norepinephrine)CRI,以帮助应对持续的低血压。

13:35给予诱导麻醉

给予2 mg/kg的阿法沙龙诱导麻醉。使用一次性PVC气管插管进行气管插管。静脉输液继续以4 ml/kg/h的速度进行,芬太尼CRI为4 ml/kg/h去甲肾上腺素为2 ml/kg/h

使用50:50比例稀释的氯己定作为皮肤准备。在切口中沿中线注射0.2 ml的利多卡因。诱导时体温为36.7℃,四肢包裹保温膜,并使用Bair Hugger和加热台来对抗低体温。

麻醉维持在异氟烷气体下。当维持在1.5%异氟烷时,心率为180-200次/分钟,心电图正常,呼吸频率稳定在40次/分钟。当挥发性药物浓度降低时,心率会超过200次/分钟,瞳孔反射恢复,颌部肌肉张力增强。因此,异氟烷气体维持在1.5%。

Crumble的粘膜仍然呈白色,毛细血管充盈时间无法测量,血压也无法读取。末端呼气二氧化碳(ETCO2)读数在3升/分钟时为20-30 mmHg,当流量增加到5升/分钟时进一步降低。由于设备故障,ETCO2的读数最终停止,当Crumble出现呼吸暂停时给予了间歇性正压通气(IPPV)10分钟。

手术医生发现膀胱有C形撕裂、坏死的浆膜、尿腹/血腹,并进行了抽吸,清除了坏死组织,并使用单丝合成聚酯缝合材料(biosyn)修复了膀胱。

14:25在手中再次抽血复

pH值上升至7.16,钾水平上升至6.5 mmol/L,游离钙下降至1.11 mmol/L。用500 ml温盐水冲洗腹腔,这导致体温下降至36.5℃。通过多普勒获得的血压为38 mmHg,并将去甲肾上腺素CRI增加至5 ml/kg/h。尿管更换为可调尿管(KatKath),用温热无菌盐水冲洗,以确保膀胱修复稳固,并连接了收集袋。

15:50时抽取了第四份血样复查

钾水平为5.5 mmol/L,游离钙为1.14 mmol/L,肌酐为365 mg/dl。Crumble在麻醉中恢复迅速,但在恢复过程中出现低体温,体温降至35.4℃。Crumble的心率为180次/分钟,呼吸频率为40次,粘膜呈白色且无充盈时间。Crumble恢复,同时继续静脉输液和两种持续输注(CRI),四肢上的保温膜被移除,并保持Bair Hugger开启以帮助对抗低体温。

16:30时Crumble已能活动

通过多普勒测得的血压为40 mmHg,去甲肾上腺素输注速率为4 ml/kg/h


17:00进行格拉斯哥疼痛评分

患宠的疼痛评分为6-7/20,因此芬太尼的剂量增加至4 mcg/kg/小时以帮助缓解疼痛。尿液从尿管周围渗漏。对膀胱进行了超声检查,以确保尿管位置正确——超声显示尿管保持在位,并进行了冲洗。

19:00时血压稳定

血压稳定在116 mmHg,Crumble在芬太尼CRI下感到舒适,在笼位中看起来神采奕奕。

对Crumble在医院过夜期间进行密切观察。患宠的血压保持稳定,第二天早上停用去甲肾上腺素。再次抽血显示pH值为7.37,肌酐为180 mg/dl。Crumble的生化指标有所改善,加上患宠在恢复期间食欲良好,因此决定此时给予非甾体抗炎药(NSAIDs)(美洛昔康)。对于猫咪来说,镇痛通常仅限于NSAIDs和阿片类药物。Crumble的体温恢复正常,检查显示患宠外周脉搏良好,心率为160次/分钟,粘膜呈淡粉色且充盈时间为1.5秒,呼吸频率为28次/分钟,患宠发出呼噜声。

次日13:00时

决定停止芬太尼的使用,继续使用4 mg/kg的美沙酮(Comfortan),随后改为0.02 mg/kg的布洛芬(Vetergesic)。在16:00时,尿管被移除。随后在16:15时,患宠在猫砂盆中排出了5.4 ml的尿液。临床计划是继续留院观察一夜,以监测尿量和疼痛情况。

在住院的第三天

Crumble的检查良好,疼痛评分较低,尿液排出良好且食欲正常(见图1)。随后,患宠办理出院,开具处方包括口服美洛昔康(Loxicom)、口服阿莫西林(Synulox)和舌下给药的Vetergesic,主人需在家中密切监测,并进行笼内休息(见图2),并安排在24-48小时内复查。


图1:Crumble在医院进行康复


图2. Crumble在笼内休息

四、讨论

到达时,给予了0.3 mg/kg的美沙酮,作为一种全激动剂,此类阿片类药物在猫的疼痛管理中效果良好(Harvey和Tasker,2013)。尽管PCO2在正常范围内,但Crumble可能处于代谢性酸中毒状态(King和Boag,2018)。

对于严重的代谢性酸中毒(pH值<7.2),可以通过给予碳酸氢钠(kg x BE x 0.3)进行治疗(King和Boag,2018),但由于酸中毒开始纠正,因此并不需要

高钾血症也可能导致T波峰值(Harvey和Tasker,2013),尽管心电图读数正常,静脉输液使用生理盐水以避免额外的钾摄入。有证据表明,在出血情况下,使用静脉输液进行低血压复苏可能是禁忌的(King和Boag,2018)。尽管如此,有研究表明,在严重创伤情况下,当平均动脉压低于60 mmHg时,应使用积极的液体复苏,直到出血或创伤得到修复(King和Boag,2018)。

使用Gelofusine来管理严重低血压伴随低血容量。尽管胶体已被证明会导致患宠急性肾损伤(Byers,2021),但临床决定是继续给予Gelofusine的推注,以试图对抗可能导致进一步器官损伤的低血压。在Gelofusine推注后,Crumble开始接受去甲肾上腺素持续输注以纠正低血压。

去甲肾上腺素持续输注有助于提高平均动脉压,并建议用于脓毒症患宠(Mazzaferro和Wagner,2001)。然而,去甲肾上腺素也存在引起心动过速性心律失常和血管收缩的风险(Mazzaferro和Wagner,2001)。

阿法沙龙(Alfaxalone)被用作麻醉诱导剂。Campagna等人(2015)的研究表明,阿法沙龙诱导对呼吸的影响很小。由于阿法沙龙没有镇痛特性,因此必须给予适当的镇痛药物(Duke-Novakovski等,2016)。在手术过程中,使用了芬太尼的持续静脉输注(CRI),因为其效果持续时间为20-30分钟,这在停止CRI时可能会带来好处(Duke-Novakovski等,2016)。

监测麻醉状态可能具有挑战性,尤其是在紧急情况下,因此使用监测设备显得尤为重要。呼气二氧化碳监测(capnography)是麻醉和患宠复苏中的有用工具(Welsh, 2009)。

在本案例中,患宠出现低二氧化碳血症(hypocapnia),尽管尝试通过增加氧气流量来纠正,但监测仪器完全停止了读数。呼气末二氧化碳分压(ETCO2)的突然下降可能表明心脏骤停(Welsh, 2009),但进一步观察显示呼气监测仪未能正常工作。

术后低体温是最常见的问题(Welsh, 2009)。这可能对患宠产生不利影响,包括心律失常、药物代谢延迟和伤口愈合障碍(Welsh, 2009)。低体温的一个原因可能是低血压(Welsh, 2009),这是本案例中的已知问题。除了静脉输液和CRI外,还使用了温盐水进行冲洗。这建议在腹腔内有尿液时进行腹腔冲洗(Ackerman, 2016)。

温盐水可以帮助应对低体温,同时加热静脉输液也是有效的方法(Davies, 2012)。电热液体加热器通常被使用,但在本案例中无法获得。

在麻醉和手术恢复期间,Crumble得到了密切监测。特别重要的是监测尿液排出,以确保患宠能够产生并排出尿液(Welsh, 2009)。

在本案例中,尿管已放置,因此尿液和液体的进出情况可以方便地监测并记录在图表上(表1)。最佳的收集方法是封闭式尿管系统。这种方法使用带有专门设计的底部阀门的收集袋。Welsh(2009)建议使用这种方法。

表1尿液详细表


建议将尿管留置48小时(Beiter, 2016),但在本案例中,由于不再需要,尿管在24小时后被拔除。这是因为患宠在舍中表现得非常活跃。在拔除尿管之前重复进行了血液检查,以确保Crumble稳定(表2)。Crumble在医院住院观察48小时后方可出院。

表2:血液检查结果


这个案例具有挑战性且富有教育意义,最终结果令人满意,Crumble恢复良好并顺利回家(见图3)。在现有的设施和技能下,管理得当。与其一开始使用胶体来改善低血压,使用去甲肾上腺素可能是更好的选择,这样可以降低在氮质血症患宠中进一步急性肾损伤的风险。

理想情况下,尿管的管理可以更加密切,以便延长留置时间,从而进一步监测尿液排出量;不过,这样做使患宠感到更加舒适,并在舍中变得更加活泼。


图 3:Crumble一年后的状况

五、参考文献

1. Ackerman N. Aspinall’s Complete Textbook of Veterinary Nursing. 3rd edn. London: Elsevier; 2016.

2.Beiter C. Urethral obstruction in male cats. Today’s Veterinary Nurse. 2016. Available at: (accessed 3 April 2023).

3. Byers C. Crystalloids versus colloids: Same controversy, new information. Advances in Small Animal Care. 2021;2:39–48. Available at: https://doi.org/10.1016/j.yasa.2021.06.002.

4.Campagna I, Schwarz A, Keller S, Bettschart-Wolfensberger R, Mosing M. Comparison of the effects of propofol or alfaxalone for anaesthesia induction and maintenance on respiration in cats. Vet Anaesth Analg. 2015;42(5):484–492. Available at: .

5.Davies T. How to prevent perioperative hypothermia in the dog and cat: causes and consequences. The Veterinary Nurse. 2012;3(1):42–47. Available at: .

6. Duke-Novakovski T, de Vries M, Seymour C. BSAVA Manual of Canine and Feline Anaesthesia and Analgesia. 3rd edn. Quedgeley: BSAVA; 2016.

7. Findji L. Lower urinary tract trauma in cats: Diagnosis and treatment. Vet Times. 2012;42(27):10–14.

8. Fossum T. Surgery of the Urinary System. World Small Animal Veterinary Association World Congress Proceedings. 2009. Available at: https://www.vin.com/apputil/content/defaultadv1.aspx?pId=11290&catId=33345&id=4252740 (accessed 3 April 2023).

9. Harvey A, Tasker S. BSAVA Manual of Feline Medicine. Quedgeley: BSAVA; 2013.

10. Kellett-Gregory L. Uroabdomen: presentation, diagnosis and management. BSAVA proceedings. 2020. Available at: https://www.bsavalibrary.com/docserver/fulltext/10.22233/9781910443774/9781910443774.40.3.pdf?expire=s1680534993&id=id&accname=guest&checksum=729800763614A5C4D07E9C38CDFE1B7F (accessed 3 April 2023).

11. King L, Boag A. BSAVA Manual of Canine and Feline Emergency and Critical Care. Quedgeley: BSAVA; 2018.

12. Mazzaferro E, Wagner A. Hypotension during anaesthesia in dogs and cats: recognition, causes, and treatment. Compendium. 2001;23(8):728–735.

13. Welsh L. Anaesthesia for Veterinary Nurses. 2nd edn. Oxford: Wiley-Blackwell; 2009.

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来源|The Veterinary Nurse

翻译|张帆

编辑|张秋雁

审核|郭羽丽

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